微信公众号 联系我们 关于我们 3618客服热线:020-32784919   推广热线:020-32780069
资讯
频道
当前位置:首页 > 医疗器械资讯 > 学术论文 > 几种抗肿瘤药物诱导Jurkat细胞凋亡的研究

几种抗肿瘤药物诱导Jurkat细胞凋亡的研究

文章来源:创新医学网发布日期:2013-02-04浏览次数:30207


  作者:毛咏秋,李喜荣,雷松  作者单位:四川大学华西医院生物治疗国家重点实验室,成都,四川,610041

  【摘要】本研究评价几种临床常用的抗肿瘤药物顺铂(CDDP)、羟基喜树碱(HCPT)、高三尖杉酯碱(HHT)和米托蒽醌(MIT)在白血病治疗中的作用,并分析其在诱导Jurkat细胞凋亡的作用,为白血病的临床治疗提供新的理论依据和思路。用Annexin V/PI双参数流式分析方法,检测这几种抗肿瘤药物诱导Jurkat细胞凋亡和死亡的效应。结果表明:MIT和HCPT在加药处理早期4小时 (P<0.05)和后期第8小时(P<0.05)都有明显的诱导Jurkat细胞凋亡的效应。HHT有明显诱导Jurkat细胞凋亡的效果,但各剂量组之间无显著差异。CDDP在高浓度和长时间作用时才显示较弱的细胞凋亡效应,明显弱于前3者。各种药物作用后均未观察到明显的细胞死亡效应。结论:MIT诱导Jurkat细胞凋亡的作用显著,Annexin V流式分析方法可作为一种可靠的临床药物筛选的方法。
  【关键词】 抗癌药物;细胞凋亡;Jurkat细胞系;Annexin V

  Effect of Several Anti-tumor Drugs on Apoptosis Induction in Jurkat Cell Line MAO Yong-Qiu,LI Xi-Rong,LEI Song State Key Laboratory of Biotherapy,West China Hospital,Sichuan University,Chengdu,610041,China

  Abstract Cisplatin (CDDP),homoharringtonine(HHT),mitoxantrone(MIT) and hydroxycamptothecin(HCPT) are highly effective anti-tumor drugs. To evaluate their effects in the therapy of leukemia and establish a valuable method to estimate anti-tumor drugs,Annexin V/PI double parameter flow cytometry was used to detect the effects of these drug inducing apoptosis and death in Jurkat cell line. The results showed that MIT and HCTP-induced apoptosis effects on Jurkat cell line were obvious at 4 hours in early phase after adding drug (P<0.05) and at 8 hours in late phase after adding drug (P<0.05). HHT had obvious effect on inducing apoptosis of Jurkat cells,but no significant difference from low to high doses. The effect of CDDP on inducing apoptosis of Jurkat cell line was obviously weaker than that of HHT,MIT and HCPT,its weak effect on apoptosis of Jurkat cell line was found only at high concentration of drug for long time. Death effects on Jurkat cell line can not be observed in every experimental group. It is concluded that low dose of MIT can effectively induced apoptosis of Jurkat cell line. Annexin V/PI double parameter flow cytometry can be used as a reliable method for clinical screening anti-tumor drugs.

  Key words anti-tumor drug; apoptosis; Jurkat cell line; Annexin V

  化疗是肿瘤治疗的一种重要方法,新的抗肿瘤药物也不断地涌现。国内在上个世纪90年代上市的抗癌药物中化学合成药米托蒽醌(MIT)、羟基脲和顺铂(CDDP)等少数几种抗癌药物,通过与DNA分子结合抑制核酸合成引起细胞死亡,这类药物称之为细胞周期非特异性药物。本研究选用米托蒽醌(MIT)、顺铂(CDDP)、羟基喜树碱(HCPT)、 高三尖杉酯碱(HHT)诱导Jurkat细胞凋亡,并通过Annexin V /PI法检测细胞凋亡及细胞死亡比例,分析不同作用时间以及不同药物浓度对Jurkat细胞凋亡的影响。材料和方法

  材料

  Jurkat细胞系由本实验室保存。顺铂(CDDP)为齐鲁制药有限公司产品、羟基喜树碱(HCPT)为黄石飞云制药厂产品、 高三尖杉酯碱(HHT)为杭州民生药业公司产品、米托蒽醌(MIT)为浙江瑞新药业公司产品;RPMI 1640为Invitrgen产品;Annexin V FITC/PI试剂盒购自晶美生物公司;贝克曼流式细胞分析仪 Elite EXP。
  诱导Jurkat细胞凋亡

  Jurkat细胞在5% CO2孵箱培养至对数生长期,镜下计数为1×106/ml,加入24孔板,每孔1 ml细胞悬液。用无血清细胞悬液将顺铂、 羟基喜树碱、高三尖杉酯碱和米托蒽醌药物配制成1 mg/ml溶液;每组药物分别设4个浓度:12.5、25、50、100 μg/ml;分别加入24孔培养板,作3个复孔。置于5% CO2孵箱培养。
  Annexin V/PI流式双参数分析[1-3]

  分别于加入药物作用2、4和8小时,吸取培养细胞悬液,用4℃预冷的PBS洗细胞2次,用250 μl结合缓冲液重悬细胞,使其浓度为1×106/ml;取100 μl细胞悬液,加5 μl Annexin V/FITC和10 μl (20 μg/ml)的碘化丙锭;混匀后室温避光孵育15分钟;用PBS洗涤2次,进行流式细胞仪(FACS)分析。Annexin V-FITC/PI双参数进行调试,以此条件进行细胞凋亡和细胞坏死率检测。图1-5横坐标表示荧光强度,纵坐标表示细胞数,图中两个峰中的左边峰表示阴性峰,右峰表示凋亡峰,右峰曲线下面积越大凋亡就越多。根据所测数据计算细胞凋亡率和继发性坏死率。
  统计学分析
  各组细胞凋亡率均取3个样本的均值,以X±SD表示,多个均数的两两比较采用《中国医学百科全书•医学统计学》统计软件包 (第三版)PEMS 3.1软件进行检验。
  结果

  CDDP对Jurkat细胞的诱导凋亡作用
  CDDP各剂量组与对照组(未处理组)相比,在其剂量为12.5 μg/ml时,各个作用时间点上Jurkat细胞凋亡率均无明显变化;剂量为25 μg/ml和50 μg/ml时,在2小时和4小时Jurkat细胞凋亡率也无明显变化,而在作用8小时时Jurkat细胞凋亡率才有明显增高,分别为13.6%和23.9%,与对照组相比有显著差异(P<0.05)。当CDDP药物浓度增大至100 μg/ml时,作用2小时和4小时时,Jurkat细胞凋亡率无变化,在8小时时Jurkat细胞凋亡率为19.9%,与50 μg/ml剂量相比,诱导细胞凋亡率不但没有明显差别,而且有所降低(图1),这表明CDDP的作用有药物饱和效应。
  HHT对Jurkat细胞的诱导凋亡作用
  HHT各剂量组的细胞凋亡率与对照组(未处理组)相比均有明显增高(P<0.05)。Jurkat细胞凋亡率与药物剂量关系不明显,但与作用时间明显成正比。12.5 μg/ml HHT作用2、4和8小时时Jurkat细胞凋亡率分别是4.9%、20.4%和35.4% (P<0.05); 25 μg/ml HHT时分别为5.5%、12.1%和27.2%;50 μg/ml HHT时分别为5.8%、12.2%和33.0%; 100 μg/ml HHT时分别是5.7%,12.1%和35.0% (P<0.05)。不同药物浓度HHT在同一时间点之间诱导Jurkat细胞凋亡率没有明显差别(图2)。
  MIT对Jurkat细胞的诱导凋亡作用
  与对照组(未处理组)相比,MIT各剂量组在作用2小时时Jurkat细胞凋亡率无明显不同,但随作用时间延长均有明显增高(P< 0.05)。12.5 μg/ml剂量组作用2、4和8小时时Jurkat细胞凋亡率分别是4.2%、20.5%和52.4%(P<0.05),25 μg/ml组分别为4.9%、30.1%和68.9%, 50 μg/ml组分别是7.2%、37.9%和81.8%(P<0.05) (图3 ),100 μg/ml组分别为6.6%,41.5%和84.1%,各作用时间点之间差别均有显著差异(P<0.05)(图4)。Jurkat细胞凋亡率在药物低剂量时随剂量增大明显增高;100 μg/ml组作用效应与50 μg/ml剂量组没有明显差别,显示有剂量饱和效应。
  HCPT对Jurkat细胞的诱导凋亡作用
  HCPT各剂量组与对照组(未处理组)相比,Jurkat细胞凋亡率均有明显增高(P<0.05),Jurkat细胞凋亡率随药物剂量增大和时间延长而明显增高,12.5 μg/ml HCPT 剂量组作用2、4和8小时时Jurkat细胞凋亡率分别是3.4%、20.9%和30.3% (P<0.05);而25 μg/ml组分别为3.7%、19.1%和30.3%;50 μg/ml组分别是5.9%、23.8%和44.6% (P<0.05),100 μg/ml组分别是3.0%、15.8%和55.7%(P<0.05)。HCPT相同剂量不同作用时间点的Jurkat细胞凋亡率均有显著差异(P<0.05) (图5) ;HCPT不同剂量同一作用时间点的诱导Jurkat细胞凋亡率在2小时与4小时间没有显著差异,而两者与8小时作用相比均有显著差异(P<0.05)。
  各药物组间诱导Jurkat细胞凋亡的比较
  顺铂、高三尖杉酯、米托蒽醌和羟基喜树碱4种药物间不同剂量组在作用2小时时诱导Jurkat细胞的凋亡率无明显不同,在4小时和8小时时各组间均有显著差别(P<0.05,图6)。药物诱导Jurkat细胞凋亡的强度依次为MIT、HCPT、HHT和CDDP。
  各药物组诱导的Jurkat细胞死亡

  各药物组均未发生明显的诱导Jurkat细胞死亡的现象。CDDP诱导Jurkat细胞死亡的效应随药物浓度的增高和作用时间的延长而增强,在药物浓度为25、50和100 μg/ml,作用8小时时诱导的Jurkat细胞死亡率分别为7.6%、9.9%和10.3%。12.5 μg/ml HHT短时间和长时间作用时细胞死亡效应均不明显,只在药物浓度为25、50和100 μg/ml,作用4小时时显示微弱的诱导Jurkat细胞死亡的效应,细胞死亡率分别为6.6%、5.2%和6.6%。MIT只在低药物浓度12.5 μg/ml和25 μg/ml作用8小时时细胞死亡率分别为4.0%和4.5%(图7),药物浓度增高时却并未发生明显的细胞死亡。而HCPT则只在增高药物浓度至50 μg/ml和100 μg/ml,长时间作用8小时时才发生细胞死亡,细胞死亡率分别为5.0%和9.6%。详见附表。
  Table. Effect of anti-tumor drugs on apoptosis of Jurkat cells (略)

  讨 论
  多种化疗药物可以诱导肿瘤细胞凋亡,如米托蒽醌(MIT)、顺铂(CDDP)、羟基喜树碱(HCPT),高三尖杉酯碱(HHT)等。有文献报道米托蒽醌可诱导人髓系白血病细胞凋亡[4],并逐步用于白血病的治疗。CDDP曾用于治疗卵巢癌、前列腺癌、睾丸癌、肺癌、鼻咽癌、食道癌、恶性淋巴瘤、乳腺癌、头颈部鳞癌、甲状腺癌及成骨肉瘤等多种实体肿瘤,均显示出良好的疗效,其机制是损伤线粒体功能、使DNA 断裂和抑制细胞发育[5],近有文献报道,CDDP可通过引起CD95聚集成簇进而诱导凋亡[6]。然而,其较强的肾毒性限制了其临床使用。羟基喜树碱(HCPT)和高三尖杉脂碱(HHT)均是从植物中提取的生物碱,具有显著的抗癌活性。HCPT在临床上主要用于结肠、直肠癌、肺癌及白血病等恶性肿瘤的治疗,也有很强的诱导人白血病细胞和消化系统肿瘤细胞凋亡的作用[7,8]。
  临床证明,HHT对急性粒细胞白血病、急性单核细胞白血病、红系白血病等各种急性非淋巴性白血病及慢性粒细胞白血病均有较好的疗效。研究表明,HHT可诱导人野生型P53白血病细胞、HL-60,K562和Jurkat细胞等凋亡,诱导机制可能是通过破坏或改变线粒体跨膜电位或细胞色素C、AIF的释放和caspase的活化等[9-11],同时还有诱导白血病细胞分化和抑制转移的作用[12]。本研究根据近年的研究成果和临床白血病治疗的问题和现状,用可靠的Annexin V/PI流式双参数分析方法,比较了几种抗肿瘤药物诱导Jurkat细胞凋亡的作用,为解决临床白血病治疗的问题提供新的依据和思路。
  细胞发生凋亡的早期,膜磷脂酰丝氨酸(PS)由脂膜内侧翻向外侧。Annexin V是一种磷脂结合蛋白,与磷脂酰丝氨酸有高度亲和力,故可通过细胞外侧暴露的磷脂酰丝氨酸与凋亡早期细胞的胞膜结合。因此,Annexin V被作为检测细胞早期凋亡的灵敏指标之一。在细胞发生凋亡时,膜磷脂酰丝氨酸外翻的发生早于细胞核的变化。本研究结合鉴定细胞死活的核酸染料(PI),使用Annexin V/PI流式双参数分析来区分凋亡细胞与死亡细胞,检测几种实验药物诱导Jurkat细胞凋亡和死亡的效应。
  本研究结果显示,各药物均显示不同程度的诱导Jurkat细胞凋亡的效应。CDDP小剂量时无明显诱导Jurkat细胞凋亡的效应,只在大剂量长时间作用时才显示出诱导Jurkat细胞凋亡效应。HHT和MIT诱导Jurkat细胞凋亡效应均随药物剂量增大明显增高,但HHT各剂量组在不同时间点细胞凋亡率无明显变化,MIT诱导Jurkat细胞凋亡效应随药物作用时间延长而明显增强。HCPT组不同药物剂量同一作用时间点诱导Jurkat细胞凋亡率在2小时与4小时间没有显著差异,但作用8小时时均有显著差异。MIT诱导Jurkat细胞凋亡效应的强度明显强于其他3种药物,CDDP只显示微弱的细胞凋亡效应。前3种药物随剂量增大均显示出药物饱和效应。
  各药物组均未显示明显的诱导Jurkat细胞死亡的变化。CDDP和HCPT只在高药物浓度长时间作用时才显示微弱的细胞死亡效应。HHT短时间和长时间作用时细胞死亡效应均不明显,只在药物作用4小时时显示微弱的诱导Jurkat细胞死亡的效应。MIT却只在低药物浓度作用时显现弱的细胞死亡效应,药物浓度增高时细胞死亡效应却不明显。上述结果表明,可能需要延长作用时间才能显示明显的细胞死亡效应。
  本研究提示,MIT和HCPT在白血病治疗方面具有较强作用;同时提供了一种临床实验药物作用可靠的Annexin V/PI流式双参数分析方法。有研究表明,可溶性的肿瘤坏死因子家族配体(sTRAIL)具有明显的肿瘤细胞增殖抑制效应和凋亡诱导作用[13]。文献报道,NF-κB可增强HHT诱导的白血病细胞凋亡[14]。抗肿瘤药物与生物制剂联合使用将会给肿瘤治疗带来新的突破。
  【参考文献】
  1 Yang YW,Wei AC,Shen SS. The immunogenicity-enhancing effect of emulsion vaccine adjuvants is independent of the dispersion type and antigen release rate-a revisit of the role of the hydrophile-lipophile balance (HLB) value. Vaccine,2005; 23: 2665-2675

  2 Baxa DM,Luo X,Yoshimura FK. Genistein induces apoptosis in T lymphoma cells via mitochondrial damage. Nutr Cancer,2005; 51: 93-101

  3 曹云新,金卫林,金伯泉. 一种特异性检测细胞凋亡和细胞周期的新方法. 中华医学研究杂志,2003; 3: 1065-1066

  4 Bhalla K,Ibrado AM,Tourkina E,et al. High-dose mitoxantrone induces programmed cell death or apoptosis in human myeloid leukemia cells. Blood,1993; 82: 3133-3140

  5 Tacka KA,Dabrowiak JC,Goodisman J,et al. Effects of cisplatin on mitochondrial function in Jurkat cells. Chem Res Toxicol,2004; 17:1102-1111

  6 Ramesh G,Reeves WB. TNFR2-mediated apoptosis and necrosis in cisplatin-induced acute renal failure. Am J Physiol Renal Physiol,2003; 285: F610-618

  7 Shimizu T,Pommier Y. Camptothecin-induced apoptosis in p53-null human leukemia HL-60 cells and their isolated nuclei: effects of the protease inhibitors Z-VAD-fmk and dichoroisocoumarin suggest an involvement of both caspases and serine protease. Leukemia,1997; 11: 1238-1244

  8 Tu SP,Zhong J,Tan JH. et al. Induction of apoptosis by arsenic trioxide and hydroxy camptothecin in gastriccancer cells in vitro. World J Gastroentero,2000; 6: 532-539

  9 Cai Z,Lin M,Wuchter C,et al. Apoptotic response to homoharringtonine in human wt p53 leukemic cells is independent of reactive oxygen species generation and implicates BAX translocation,mitochondrial cytochrome c release and caspase activation. Leukemia,2001; 15: 567-574

  10 Junghan BC,Etzrodt D,Jain SK,et al. Homoharringtonine induces apoptosis in HL-60,K562 and Jurkat cells,but not in Raji. Blood,1999; 94 (Suppl 1,pt.1):192b

  11 Etzrodt D,Junghan BC,Jain SK,et al. Induction of apoptosis in the myeloid leukemic cell lines HL-60 and K562 by homoharringtonine. Onkologie,1999; 22 (Suppl 1):110

  12 卢大用,胥 彬,曹静懿. 高三尖杉酯碱对白血病细胞分化和肿瘤转移的影响. 上海大学学报(自然科学版),1999; 5: 175-177

  13 唐蓓,何凤田,蔡绍皙.可溶性人TRAIL分子对Jurkat细胞的杀伤作用. 中华微生物学和免疫学杂志,2004; 24: 682-686

  14 史剑慧,许小平,张宗梁等. 核因子-κB活化抑制增强高三尖杉酯碱诱导白血病细胞凋亡. 中华内科杂志,2003; 42:292-295.