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TaqmanMGB探针检测慢性骨髓增殖性疾病患者的JAK2V617F突变

文章来源:发布日期:2011-02-12浏览次数:57593

 作者:孙雪梅, 徐祖琼, 于慧, 赖仁胜, 谢玲, 顾香芳,夏珺, 李建勇

【摘要】   目的: 采用不同方法检测慢性骨髓增殖性疾病(CMPD)患者的JAK2V617F突变率, 评估临床应用的可能性。方法: 提取84例Ph阴性CMPD患者单个核细胞DNA, 利用Real time PCR联合TaqmanMGB探针检测骨髓增殖性疾病患者的JAK2V6A7F的发生率, 并利用限制性片段长度多态性(RFLP)对照检测CMPD患者的JAK2V617F突变率, 用基因测序验证两种结果。结果: Real time PCR联合TaqmanMGB探针检测84例Ph(-)CMPD患者, 42例存在JAK2V617F, 突变率为50%; 其中PV、ET、IMF患者的突变率分别为76.7%(23/30)、25.9%(7/27)、42.5%(9/20), 经RFLP检测84例Ph(-)CMPD总的突变率为33.3%, 测序结果验证了Real time PCR联合TaqmanMGB探针检测结果。结论: TaqmanMGB探针联合Real time PCR方法有较高的准确率, 可以作为检测JAK2V617F突变的方法。

【关键词】 慢性骨髓增殖性疾病; JAK2突变; 检测方法

  慢性骨髓增殖性疾病(CMPD)是以骨髓过度增殖为特点的一类疾病, Ph阴性CMPD包括真性红细胞增多症(PV)、慢性特发性骨髓纤维化(CIMF)、原发性血小板增多症(ET)、不能分类的骨髓增殖性疾病(CMPDU)和慢性嗜酸性粒细胞白血病(CEL/HES)等。2005年开始多个研究小组发现Ph阴性CMPD患者中存在JAK2V617F突变[1, 2], 功能研究以及模式动物研究显示该突变可引起JAK2激酶及下游信号通路的持续活化, 导致细胞恶性增殖和凋亡抑制[3]。新的WHO诊断标准强调了JAK2V617F突变的重要性, JAK2V617F应用于临床诊断要求有简便而灵敏的检测方法[4]。TaqmanMGB探针是一种新型检测单核苷酸多态性的探针, 我们利用这种探针联合Real time PCR方法5检测CMPD患者的JAK2V617F突变率, 并与限制性片段长度多态性以及基因测序相比较, 以寻找一种方便快捷的检测手段。

  1 材料和方法

  1.1 材料

  84例Ph阴性CMPD患者, 中位年龄51岁, 其中PV 30例, ET 27例, IMF 20例, CMPDU 7例, 其中男47例, 女37例, 6例骨髓移植供者作为正常对照, 中位年龄为32岁, 男3例, 女3例。诊断标准符合2001年WHO标准[6]。

  1.2.1 样本收集和单个核细胞分离

  患者外周血或者骨髓经肝素抗凝后收集, 外周血经上臂静脉、骨髓经髂前上棘或髂后上棘采集。利用人淋巴细胞分离液分离外周血/骨髓单个核细胞。

  1.2.2 JAK2V617F突变检测

  提取单个核细胞DNA, 保存于-20℃; 利用紫外分光光度计检测DNA浓度; 利用Real time PCR联合TaqmanMGB探针检测样本JAK2V617F突变: MGB探针: FAMCCACAGACACATACT MGB ; TETCCACAGAAACATACTCMGB;Taq引物:FP:5TGCTCTGAGAAAGGCATTAGAAAG3; RP:5GCAGCAAGTATGATGAGCAAGC3; 按下列体系加样(20 μL体系): 2×HoTaq PCR Reaction Mix 10 μL, 探针mix(10 μmol/L)0.6 μL, 引物mix(20 μmol/L)0.5 μL, 模板(25 mg/L)2 μL, ddH2O水6.7 μL。反应条件: 2 min 50℃、10 min 95℃, 30 s 95℃, 34 s 62℃, 50个循环。利用Applied Biosysterm软件观察结果。限制性片段长度多态性检测JAK2V617F突变: 利用引物F: 5′GGGTTTCCTCAGAAC GTTGA3′; R:5′TCATTGCTTTCCTTTTTCACAA3′经PCR扩增样本DNA, 扩增出的DNA片段经提纯后利用BsaⅪ酶酶切, 利用琼脂糖凝胶电泳鉴定结果。比较上述两种方法检测的结果, 将结果不同的样本DNA经PCR扩增后送基因测序。

  1.2.3 统计学分析

  使用SPSS10.0软件, 利用配对卡方检验以及Kappa检验, 比较两种检测手段的检出率。

  2 结果

  2.1 TaqmanMGB探针联合Real time PCR检测结果

  84例PhCMPD患者中有42例患者有突变, 突变率为50%。其中30例PV患者中有23例患者有突变, 其中两例为纯和突变, 其余21例为杂合突变, 突变率为76.7%(23/30); 27例ET患者中有7例患者有突变, 均为杂合突变, 阳性率为25.9%(7/27); 其余患者无突变。20例IMF患者中有9例患者有突变, 均为杂合突变, 突变率为42.5%(9/20), 其余患者无突变。7例CMPDU中有3例有突变, 均为杂合突变(3/7), 其余患者无突变。6例骨髓移植供者均无突变(图1)。

  2.2 限制性片段长度多态性检测JAK2V617F突变结果

  84例Ph阴性CMPD患者中有28例患者检测到JAK2V617F突变(33.3%), 其中30例PV患者中有16例有JAK2V617F突变, 即53.3%(16/33), 27例ET患者中有5例有突变, 突变率为14.8%(5/27); 20例IMF患者中有5例有突变, 突变率为25%(5/20), 7例CMPDU中2例有突变(2/7), 6例骨髓移植供者均无突变。

  2.3 测序结果

  84例患者中有18例患者检测结果不一致, 其中16例为经Real time PCR检测到有JAK2V617F突变, 但经RFLP方法未检测出突变, 2例经RFLP方法检测有突变但经Real time PCR检测提示无突变, 将这18例样本重新扩增后送测序, 并将2例纯合突变样本也扩增后基因测序。16例Real time PCR检测为有JAK2V617F突变的患者, 经测序也提示有JAK2V617F突变, 但均为杂合突变, 野生的碱基G的荧光强度高于突变的碱基T的荧光强度, 与相应样本的的Realtime PCR检测中荧光强度一致; 2例经RFLP检测提示有突变患者, 经测序后提示无JAK2V617F突变(图2)。

3 讨论

  国外研究组报道JAK2V617F突变在 PV中发生率为65%~97%, ET为23%~57%, IMF为35%~50%; 我们利用Real time PCR 检测的PV、ET、IMF患者的突变率分别为76.7%(23/30)、25.9%(7/27)、42.5%(9/20)。获得性突变使jak2基因编码的蛋白质第617个氨基酸从缬氨酸转化为苯丙氨酸, 使JAK2介导的包括促红细胞生成素(EPO)、血小板生成素(TPO)、粒细胞巨噬细胞集落刺激因子(GMCSF)、白细胞介素3(IL3)、生长因子(GH)在内的多种细胞因子的信号转导在没有信号刺激下能持续激活, 引起细胞持续增殖, 这是骨髓增殖性疾病发生的重要环节。

  目前, 用于JAK2突变的研究与临床检测方法众多[7], 我们采用的TaqmanMGB探针是联合传统的Taqman以及MGB探针组成的新型探针, 是单核苷酸多态性的检测中常用的探针, MGB探针可以结合在DNA 双螺旋的小沟里, 从而起到稳定DNA双螺旋的作用5, 使探针更加稳定以及更具特异性, 实验中所用的MGB探针因其长度较短, 使淬灭分子与报告基团在空间位置上更接近, 使实验的结果更精确, 另外由于探针3′端结合了MGB , 使得探针的Tm 值提高, 大大增加了探针的杂交稳定性, 提高了配对与非配对模板间的Tm 值差异, 使非特异性杂交显著降低。我们检测的总的检测率(50%)高于限制性片段长度多态性的检出率(33.3%), 而且与测序结果一致, 检出率较高。国内阮氏8曾用同样的方法检测了MPD患者JAK2V617F突变, 其中76例PV、115例ET和19例MF患者JAK2V617F突变的检出率分别为70%、51%及58%; 而在其他恶性血液病及16例正常供者骨髓细胞中的检出率均为0。认为JAK2V617F突变在我国MPD患者中是广泛存在的。利用TaqManMGB探针进行实时定量PCR的方法可快速、准确地检测JAK2V617F突变。Elizabeth利用Real time PCR方法检测CMPD患者的JAK2V617F突变率为39%, 可以在含有含2.5%突变的DNA中检测到突变9, Poodt也利用Real time PCR方法但使用的探针为MGB探针, 可以在含有0.8%的突变的DNA中检测出突变, 敏感度比其他实验组所用的方法高10。我们利用TaqmanMGB探针联合Real time PCR方法我们检测的总的检出率(50%)高于限制性片段长度多态性的检出率(33.3%), 而且与测序结果一致, 检出率较高。而且此方法所需实验步骤少, 减少了污染发生的可能。另外Real time PCR可以进行定量检测, 为患者临床随访提供监测手段, 为疾病的发生发展以及发病机制的研究提供平台。

【参考文献】
  [1]Baxter EJ, Scott LM, Campbell PJ, et al. Acquired mutation of the tyrosine kinase JAK2 in human myeloproliferative disorders[J]. Lancet, 2005, 365(9464): 1054-1061.

  [2]Levine RL, Wadleigh M, Cools J, et al. Activating mutation in the tyrosine kinase JAK2 in polycythemia vera, essential thrombocythemia, and myeloid me[x]taplasia with myelofibrosis[J]. Cancer Cell, 2005, 7(4): 387-397.

  [3]Wernig G, Mercher T, Okabe R,et al. ex[x]pression of Jak2V617F causes a polycythemia veralike disease with associated myelofibrosis in a murine bone marrow transplant model[J]. Blood, 2006, 107(11): 4274-4281.

  [4]Tefferi A, Vardiman JW. Classification and diagnosis of myeloproliferative neoplasms: the 2008 World Health Organization criteria and pointofcare diagnostic algorithms[J]. Leukemia, 2008, 22(1): 14-22.

  [5]Kutyavin IV, Afonina IA, Mills A, et al. 3′Minor groove binderDNA probes increase sequence specificity at PCR extension temperatures[J]. Nucleic Acids Res, 2000, 28(2): 655-661.

  [6]Vardiman JW, Harris NL, Brunning RD. The World Health Organization (WHO) classification of the myeloid neoplasms[J]. Blood, 2002, 100(7): 2292-2302.

  [7]徐祖琼, 孙雪梅. Ph(-)慢性骨髓增殖性疾病JAK2V617F检测技术及临床应用的进展[J]. 细胞与分子免疫学杂志, 2008, 24(11): 1123-1125.

  [8]阮国瑞, 陈珊珊, 李玲娣, 等. TaqManMGB探针检测骨髓增殖性疾病患者JAK2V617F突变[J]. 中华医学杂志, 2007, 87(34): 2401-2404.

  [9]Elizabeth CW, Katy H, Lorna WH, et al. Development of a quantitative realtime polymerase chain reaction assay for the detection of the JAK2 V617F mutation[J].J Mol Diag, 2007, 9(1); 42-46.

  [10]Poodt J, Fijnheer R, Walsh IB, et al. A sensitive and reliable semiquantitative realtime PCR assay to detect JAK2 V617F in blood[J]. Hematol Oncol, 2006, 24(4): 227-233.